ИССЛЕДОВАНИЕ КОНФОРМАЦИОННЫХ ПЕРЕХОДОВ ИОН-ТРАНСПОРТИРУЮЩИХ АТФАЗ Р-ТИПА С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ОПТИЧЕСКИХ МЕТОДОВ (ФЛУОРЕСЦЕНТНАЯ СПЕКТРОСКОПИЯ, ГЕНЕРАЦИЯ ВТОРЫХ ГАРМОНИК И АНИЗОТРОПИЯ ФОСФОРЕСЦЕНЦИИ С ВЫСОКИМ ВРЕМЕННЫМ РАЗРЕШЕНИЕМ)
Рубцов А. М., Куинн П. Дж., МакСтей Д., Лопина О. Д.
Биологический факультет МГУ им. М.В. Ломоносова, 119899 Москва; *Кингс Колледж Лондонского университета, Лондон; *Отдел Прикладных Исследований Университета Роберта Гордона, Абердин, Великобритания
Ион-транспортирующие АТФазы
Р-типа (или Е1-Е2-типа), в частности, Са-АТФаза саркоплазматического
ретикулума и Na-,K-АТФаза плазматических мембран, в процессе работы
могут находиться в двух основных конформациях - Е1 и Е2, переход
между которыми обеспечивается связыванием переносимых ионов и
фосфорилированием/дефосфорилированием фермента в процессе гидролиза
АТФ. Исследование конформационных переходов ион-транспортирующих
АТФаз с использованием классических методов анализа вторичной
структуры белков (круговой дихроизм, Рамановская и Фурье-ИК-спектроскопия)
затруднено, так как содержание a-спиральных и b-структурных доменов
в молекулах этих ферментов при Е1-Е2-переходе изменяется незначительно
(на 1-2%). Для детального анализа конформационной подвижности
в Са-АТФазу в условиях, позволяющих модифицировать единственную
SH-группу в молекуле фермента, была включена флуоресцентная метка
7-хлор-4-нитробензо-2-окса-1,3-диазол, а Na,K-АТФаза была модифицирована
йодацетамидфлуоресцеином. Интенсивность флуоресценции меченых
препаратов обеих АТФаз при переходе из Е2 в Е1 конформацию увеличивается
на 70-80%. Аналогичное увеличение интенсивности флуоресценции
наблюдается с ростом рН среды в диапазоне 6,0 - 9,0, а также
при связывании аллостерического субстрата АТФ (но не ГТФ). Генерацию
вторых гармоник исследовали после прикрепления мембранных препаратов
Са-АТФазы и Na,K-АТФазы к стеклянной поверхности, обработанной
гексаметилдисилазаном. Вторые гармоники (l=532 нм) генерируются
при освещении образцов светом аргонового лазера (l = 1064 нм),
причем их интенсивность зависит от того, в какой конформации (Е1
или Е2) находится фермент. Интенсивность вторых гармоник увеличивается
на 80-100% при связывании с обеими АТФазами АТФ (но не ГТФ) и
при образовании двумерных кристаллов Са-АТФазы в мембранах СР
в присутствии ванадата. Для анализа
вращательной подвижности молекул ферментов в мембранах остаток
лизина, находящийся в АТФ-связывающем центре, специфически метили
5-эозинизотиоцианатом, и анализировали кривые затухания анизотропии
фосфоресценции. Полученные экспериментальные кривые наиболее адекватно
описываются суммой двух экспонент, что позволяет говорить о присутствии
в мембране вращающихся частиц разного размера. Быстрая компонента
(время вращательной корреляции 12-15 mс) отражает, по-видимому,
вращение в мембране мономерной формы фермента, тогда как медленная
компонента (время вращательной корреляции 200-400 mс) связана
с присутствием в мембране олигомерных комплексов Са-АТФазы и Na,K-АТФазы.
Вклад быстрой и медленной компонент в общую анизотропию изменяется
при Е1-Е2 переходе, однако и мономерная, и олигомерная формы фермента
присутствуют в мембранах независимо от конформационного состояния
обеих АТФаз. (Поддержано грантом РФФИ № 98-04-49184 и грантом
FEBS.).